Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе

Аффилиация:
Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова
Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов

Кудрявцев И. В.

Аффилиация:
Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов
Институт экспериментальной медицины

Баранова О. П.

Аффилиация: Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова

Серебрякова М. К.

Аффилиация: Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов

Сесь Т. П.

Илькович М. М.

Тотолян А. А.

Аффилиация:
Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова
Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Название журнала

Российский иммунологический журнал

Выпуск

Том 12 Номер 3

Страницы

348-353

Аннотация

На основании экспрессии CD45RA, CD62L, CD27 и CD28 в периферической крови больных с хроническим впервые выявленным саркоидозом (n=46) были выделены субпопуляции цитотоксических Т-лимфоцитов, находившиеся на различных стадия дифференцировки. При хроническом саркоидозе отмечалось снижение относительного содержания CD3+CD8+ Т-лимфоцитов «не эффекторных» популяций – «наивных» клеток и клеток центральной памяти по сравнению группой контроля (n=46), тогда как TEMRA CD3+CD8+ клетки были повышены. В рамках ЕМ клеток отмечалось снижение уровня ЕМ1 клеток, тогда как среди TEMRA наблюдалось увеличение популяций рЕ2 и зрелых эффекторных клеток. Полученные результаты указывают на интенсификацию процессов созревания CD3+CD8+ лимфоцитов в лимфоидной ткани под постоянным антигенным воздействием.

Ключевые слова

саркоидоз, цитотоксические Т-лимфоциты, CD45RA и CD62L, CD27 и CD28, проточная цитометрия

Получено

11.01.2019

Дата публикации

12.01.2019

Цитировать Скачать pdf Для скачивания PDF необходимо авторизоваться

ГОСТ	Лазарева Н. М. , Кудрявцев И. В. , Баранова О. П. , Серебрякова М. К. , Сесь Т. П. , Илькович М. М. , Тотолян А. А. Субпопуляционный состав цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови при саркоидозе // Российский иммунологический журнал – 2018. – Tом 12. – Номер 3 C. 348-353 [Электронный ресурс]. URL: http://ras.jes.su/ruimm/s207987840001602-1-1 (дата обращения: 26.04.2024). DOI: 10.31857/S102872210002408-3
MLA	Lazareva, N., Kudryavtsev, I., Baranova, O., Serebriakova, M., Ses’, T., Ilkovich, M., Totolyan, A. "Peripheral blood cytotoxic T cells in patients with sarcoidosis." Rossiiskii immunologicheskii zhurnal 12.3 (2018):348-353. DOI: 10.31857/S102872210002408-3
APA	Lazareva N., Kudryavtsev I., Baranova O., Serebriakova M., Ses’ T., Ilkovich M., Totolyan A. (2018). Peripheral blood cytotoxic T cells in patients with sarcoidosis. Rossiiskii immunologicheskii zhurnal 12(3), pp.348-353 DOI: 10.31857/S102872210002408-3

Размещенный ниже текст является ознакомительной версией и может не соответствовать печатной.

всего просмотров: 1201

Оценка читателей: голосов 0

1. Визель А. А., Визель И. Ю., Амиров Н. Б. Эпидемиология саркоидоза в Российской Федерации. Вестник современной клинической медицины, 2017, 10 (5), 66–73. [Vizel A. A., Vizel I. Yu., Amirov N. B. Epidemiology of sarcoidosis in the Russian Federation. Bulletin of Contemporary Clinical Medicine, 2017, 10 (5), 66–73].

2. Sakthivel P., Bruder D. Mechanism of granuloma formation in sarcoidosis. Curr. Opin. Hematol. 2017, 24(1), 59–65.

3. Shigehara K., Sh? ubo N., Ohmichi M., Takahashi R., Kon S., Okamura H., Kurimoto M., Hiraga Y., Tatsuno T., Abe S., Sato N. IL-12 and IL-18 are increased and stimulate IFN-gamma production in sarcoid lungs. J. Immunol. 2001, 166 (1), 642–649.

4. Georas S. N., Chapman T. J., Crouser E. D. Sarcoidosis and T-helper cells. Th1, Th17, or Th17.1? Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2016, 193 (11), 1198–200.

5. D’Errico S., Bello S., Cantatore S., Neri M., Riezzo I., Turillazzi E., Fineschi V. Immunohistochemical characterisation and TNF-? expression of the granulomatous infi ltration of the brainstem in a case of sudden death due to neurosarcoidosis, Case report. Forensic Science International 2011, 208, e1–e5.

6. Katchar K., Soderstrom K., Wahlstrom J., Eklund A., Grunewald J. Characterization of natural killer cells and CD56+ T-cells in sarcoidosis patients. Eur. Respir. J. 2005, 26(1), 77–85.

7. Хайдуков С. В., Байдун Л. А., Зурочка А. В., Тотолян А. А. Стандартизованная технология «исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» (проект). Медицинская иммунология 2012, 14(3), 255–268. [Khaydukov S., Baidun L., Zurochka A., Totolyan A. Methods. Medical Immunology (Russia) 2012, 14(3), 255–268. (In Russ.)].

8. Кудрявцев И. В., Борисов А. Г., Волков А. Е., Савченко А. А., Серебрякова М. К., Полевщиков А. В. Анализ уровня экспрессии CD56 и CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами различного уровня дифференцировки. Тихоокеанский медицинский журнал 2015, 2(60), 30–35. [Kudryavtsev I. V., Borisov A. G., Volkov A. E., Savchenko A. A., Serebryakova M. K., Polevschikov A. V. CD56 and CD57 expression by distinct populations of human cytotoxic T lymphocytes. Pacifi c Medical Journal 2015, 2(60), 30–35].

9. Кудрявцев И. В., Борисов А. Г., Кробинец И. И., Савченко А. А., Серебрякова М. К. Определение основных субпопуляций цитотоксических Т-лим фо цитов методом многоцветной проточной цитометрии. Медицинская иммунология 2015, 17(6), 525–538. [Kudryavtsev I. V., Borisov A. G., Krobinets I. I., Savchenko A. A., Serebryakova M. K. Multicolor fl ow cytometric analysis of cytotoxic T cell subsets. Medical Immunology (Russia) 2015, 17(6), 525–538.].

10. Parasa V. R., Forsslund H., Enger T., Lorenz D., Kullberg S., Eklund A., SkoldvM., Wahlstrom J., Grunewald J., Brighenti S. Enhanced CD8+ cytolytic T cell responses in the peripheral circulation of patients with sarcoidosis and non-Lofgren’s disease. Respir Med. 2018, 138, 38–44.

11. Ding J., Dai J., Cai H., Gao Q., Wen Y. Extensively disturbance of regulatory T cells – Th17 cells balance in stage II pulmonary sarcoidosis. Int J Med Sci. 2017, 14(11), 1136–1142.

12. Braun N. A., Celada L. J., Herazo-Maya J. D., Abraham S., Shaginurova G., Sevin C.M., Grutters J., Culver D. A., Dworski R., Sheller J., Massion P. P., Polosukhin V. V., Johnson J. E., Kaminski N., Wilkes D. S., Oswald-Richter K. A., Drake W. P. Blockade of the programmed death-1 pathway restores sarcoidosis CD4(+) T-cell proliferative capacity. Am J Respir Crit Care Med. 2014, 190(5), 560–571.

13. Wahlstrom J., Katchar K., Wigzell H., Olerup O., Eklund A., Grunewald J. Analysis of intracellular cytokines in CD4+ and CD8+ lung and blood T cells in sarcoidosis. Am J Respir Crit Care Med. 2001, 163(1), 115–121.

14. Кудрявцев И. В. Т-клетки памяти: основные популяции и стадии дифференцировки. Российский иммунологический журнал. 2014, 8, 4 (17), 947– 964. [Kudryavtsev I. V. Memory T cells: major populations and stages of diff erentiation. Russian Journal of Immunology. 2014, 8, 4 (17), 947–964].

15. Romero P., Zippelius A., Kurth I., Pittet M.J., Touvrey C., Iancu E.M., Corthesy P., Devevre E., Speiser D.E., Rufer N. Four functionally distinct populations of human eff ector-memory CD8+ T lymphocytes. J Immunol. 2007, 178(7), 4112–4129.