Все
 
 
 


Эффекты влияний рекомбинантного IFNα2b на уровень экспрессии CD16, CD66b, CD33, CD11b рецепторов нейтрофильных гранулоцитов условно-здоровых детей в эксперименте in vitro
 
Код статьиS102872210002432-0-1
DOI10.31857/S102872210002432-0
Тип публикации Статья
Статус публикации Опубликовано
Авторы
Чудилова Г. А. 
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Нестерова И. В.
Аффилиация:
Кубанский государственный медицинский университет
Российский университет дружбы народов
Русинова Т. В.
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Ковалева С. В.
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Ломтатидзе Л. В.
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Тараканов В. А.
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Веревкина В. С.
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Павленко В. Н.
Аффилиация: Кубанский государственный медицинский университет
Название журналаРоссийский иммунологический журнал
ВыпускТом 12 Номер 3
Страницы486-492
Аннотация

Полифункциональность нейтрофильных гранулоцитов (НГ) является результатом богатой экипировки НГ структурами, тонко реагирующими на изменения экстрацеллюлярного окружения и внутриклеточных процессов. В настоящее время идет волна публикаций, отмечающих важность полноценного участия НГ в каскаде иммунологических реакций. При этом авторы отводят ключевую роль именно НГ как при запуске, так и последующей регуляции и реализации иммунного ответа. Показано существование различных популяций НГ, отличающихся по профилю оснащения мембранными антигенами и проявляющих различные фукциональные возможности. Целью настоящего исследования явилось изучение влияний рекомбинантного ИФНα2b (rIFNα2b) на нетрансформированную и экспериментально трансформированную в системе in vitro CD16+CD66b+CD33+CD11b+ субпопуляцию НГ в образцах периферической крови ус лов но-здо ро вых детей. Уровень экспрессии мембранных рецепторов НГ определяли методом проточной цитометрии. Проведена оценка изучаемых показателей нетрансформированных НГ (контроль) и НГ после инкубации с rIFNα2b и N-формил-метионил-лейцил-фенилаланином (fMLP). Установлено иммунорегуляторное влияние rIFNα2b на нетрансформированный фенотип CD16+CD66b+CD33+CD11b+НГ и иммуномодулирующие эффекты rIFNα2b в отношении fMLP-трансформированного фенотипа НГ периферической крови условно-здоровых детей.

Ключевые слованейтрофильные гранулоциты, фенотип, рекомбинантный интерферон
Получено12.01.2019
Дата публикации12.01.2019
Цитировать   Скачать pdf Для скачивания PDF необходимо авторизоваться
Размещенный ниже текст является ознакомительной версией и может не соответствовать печатной.

всего просмотров: 1528

Оценка читателей: голосов 0 

1. Scapini P., Marini O., Tecchio C., Cassatella M. A. Human neutrophils in the saga of cellular heterogeneity: insights and open questions. Immunol. Rev. 2016, 273(1) 48–60. DOI: 10.1111/imr.12448.
2. Kobayashi Y. Neutrophil biology: an update. EXCLI J. 2015, 14, 220–227. DOI: 10.17179/excli2015–102.
3. Нестерова И. В., Колесникова Н. В., Чудилова Г. А., Ломтатидзе Л. В., Ковалева С. В., Евглевский А. А., Нгуен Т. З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. (Часть 1). Инфекция и Иммунитет 2017, 7(3), 219– 230. DOI:10.15789/2220–7619–2017–3–219–230. [Nesterova I. V., Kolesnikova N. V., Chudilova G. A., Lomtatidze L. V., Kovaleva S. V., Yevglevsky A. A., Nguyen T. Z.L. A new look at neutrophilic granulocytes: rethinking old dogmas. (Part 1). Infection and immunity 2017, 7(3), 219–230. DOI:10.15789/2220–7619–2017–3–219–230. Russian].
4. Garley M., Jablonska E. Heterogeneity among neutrophils. Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 2018, 66(1), 21–30. DOI: 10.1007/s00005–017–0476–4.
5. Нестерова И. В., Колесникова Н. В., Чудилова Г. А., Ломтатидзе Л. В., Ковалева С. В., Евглевский А. А., Нгуен Т. З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. (Часть 2). Инфекция и иммунитет 2018, 8(1), 7–18. DOI: 10.15789/2220–7619–2018–1–7–18. [Nesterova I. V., Kolesnikova N. V., Chudilova G. A., Lomtatidze L. V., Kovaleva S. V., Yevglevsky A. A., Nguyen T. Z.L. A new look at neutrophilic granulocytes: rethinking old dogmas. (Part 2). Infection and immunity 2017, 7(3), 219–230. DOI: 10.15789/2220–7619–2018–1–7–18. Russian].
6. Elghetany M. Surface antigen changes during normal neutrophilic development: a critical review. Blood Cells Mol. Dis. 2002, 28 (2): 260–274. PMID12064921.
7. Garnache-Ottou F., Chaperot L., Biichle S., Ferrand C., Remy-Martin J. P., Deconinck E., de Tailly P. D., Bulabois B., Poulet J., Kuhlein E., Jacob M. C., Salaun V., Arock M., Drenou B., Schillinger F., Seilles E., Tiberghien P., Bensa J. C., Plumas J., Saas P. Expression of the myeloid-associated marker CD33 is not an exclusive factor for leukemic plasmacytoid dendritic cells. Blood 2005, 105(3), 1256–1264. DOI: 10.1182/blood-2004–06–2416.
8. Hernandez-Caselles T., Martinez-Esparza M., Perez-Oliva A. B., Quintanilla-Cecconi A. M., Garcia-Alonso A., Alvarez-Lopez D. M., Garcia-Penarrubia P. A study of CD33 (SIGLEC-3) antigen expression and function on activated human T and NK cells: two isoforms of CD33 are generated by alternative splicing. Journal of Leukocyte Biology 2006, 79(1), 46–58. DOI: 10.1189/jlb.0205096.
9. Crocker P. R., Zhang J. New I-type lectins of the CD33- related siglec subgroup identifi ed through genomics. Biochemical Society Symposia 2002, 69; 83–94. DOI: 10.1042/bss0690083.
10. Bandura D. R., Baranov V. I., Ornatsky O. I., Antonov A., Kinach R., Udong Lou X., Pavlov S., Vorobiev S., Dick J. E. Mass cytometry: technique for real time single cell multitarget immunoassay based on inductively coupled plasma time-of-fl ight mass spectrometry. Analytical Chemistry 2009, 81, 6813–6822. DOI: 10.1021/ac901049w.
11. Ornatsky O., Bandura D., Baranov V., Nitz M., Winnik M. A., Tanner S. Highly multiparametric analysis by mass cytometry. J. Immunol. Methods 2010, 361(1–2), 1–20. DOI: 10.1016/j.jim.2010.07.002.
12. Schroder A. K., Uciechowski P., Fleischer D., Rink L. Crosslinking of CD66b on peripheral blood neutrophils mediates the release of interleukin-8 from intracellular storage. Hum. Immunol. 2006, 67(9), 676–682. DOI: 10.1016/j.humimm.2006.05.004.
13. Mandruzzato S., Brandau S., Britten C. M., Bronte V., Damuzzo V., Gouttefangeas C., Maurer D., Ottensmeier C., van der Burg S. H., Welters M. J., Walter S. Toward harmonized phenotyping of human myeloidderived suppressor cells by fl ow cytometry: results from an interim study. Cancer Immunol. Immunother. 2016, 65(2), 161–169. DOI: 10.1007/s00262–015–1782–5.
14. Zhang Y., Boesen C. C., Radaev S., Brooks A. G., Fridman W. H., Sautes-Fridman C., Sun P. D. Crystal structure of the extracellular domain of a human Fc?RIII”. Immunity. 2000, 13 (3), 387–95. DOI:10.1016/S1074–7613(00)00038–8.
15. Нестерова И. В. Препараты интерферона альфа в клинической практике: когда и как. Лечащий врач 2017, 9, 66–76. https://www.lvrach.ru/2017/9/  [Nesterova I. V. Interferon alfa preparations in clinical practice: when and how. Treatment doctor 2017, 9, 66–76. https://www.lvrach.ru/2017/9/.  Russian].
16. Brandacher G., Margreiter D., Fuchs D. Implications of IFN-gamma-mediated tryptophan catabolism on solid organ transplantation. Curr. Drug Metab. 2007, 8(3), 273–282. PMID: 17430115.
17. Sato T., Hongu T., Sakamoto M., Funakoshi Y., Kanaho Y. Molecular mechanisms of N-Formyl-Methionylleucyl- phenylalanine-induced superoxide generation and degranulation in mouse neutrophils: phospholipase D is dispensable. Mol. Cell Biol. 2013, 33(1), 136–145. DOI: 10.1128/MCB.00869–12.
18. Schmidt T., Brodesser A., Schnitzler N., Gruger T., Brandenburg K., Zinserling J., Zundorf J. CD66b overexpression and loss of C5a receptors as surface markers for Staphylococcus aureus-induced neutrophil dysfunction. PLoS ONE2015, 10(7), e0132703. DOI: 10.1371/journal.pone.0132703.

Система Orphus

Загрузка...
Вверх