Все
 
 
 


Наноразмерный селен – индуктор устойчивости томатов к галловой нематоде Meloidogyne incognita (Kofoid et White, 1919) Chitwood, 1949
 
Код статьиS086956520003102-5-1
DOI10.31857/S086956520003102-5
Тип публикации Статья
Статус публикации Опубликовано
Авторы
Удалова Жанна  
Аффилиация: Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН
Адрес: Российская Федерация
Фолманис Гундар
Аффилиация: Институт металлургии и материаловедения им. А.А. Байкова РАН
Адрес: Российская Федерация
Хасанов Фуат
Аффилиация: Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН
Адрес: Российская Федерация
Зиновьева Светлана
Аффилиация: Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН
Адрес: Российская Федерация
Название журналаДоклады Академии наук
ВыпускТом 482 Номер 4
Страницы463-466
Аннотация

Исследовали механизмы действия наноразмерного селена, полученного методом лазерной абляции для использования в качестве абиогенного элиситора устойчивости томатов к паразитическим нематодам. Наноразмерный селен индуцировал системную устойчивость томатов к галловой нематоде, стимулировал процессы роста и развития растений, участвовал в экспрессии гена PR-6 в корнях и листьях подвергнутых инвазии растений, повышал активность ингибиторов протеиназ – маркёров системной устойчивости к инфицированию растений. Экзогенная обработка растений растворами наноселена снижала заражённость растений, влияя на морфофизиологические параметры паразитов в корнях.

Ключевые слова
Источник финансированияРабота выполнена в рамках Государственных заданий № 0109–2018–0066 и 007–00129–18–00.
Получено10.11.2018
Дата публикации10.11.2018
Цитировать   Скачать pdf Для скачивания PDF необходимо авторизоваться
Размещенный ниже текст является ознакомительной версией и может не соответствовать печатной.

всего просмотров: 1316

Оценка читателей: голосов 0 

1. Blok  V.C., Jones  J.T.,  Phillips  M.S., Trudgill  D.L. //  Bio. Essays. 2008. V.  30. № 3. P. 249–259. DOI : 10.1002/bies.20717.
2. Зиновьева С.В., Васюкова Н.И., Озерецковская О.Л. //  Прикл. Биохим. и микробиол., 2004. V. 40.  № 2. P. 133–143.
3. Molinari S. Bioassays on plant–nematode interactions. In: Plant bioassays/ Narwal S.S. (eds.).  Studium Press, LLC, Texas. 2009. P.  293–326 .
4. Udalova Zh. V., Zinovieva S.V. // Eсol. Eng. and Environ. Protection. 2015. № 2. P. 59–66.
5. Husen A, Siddiqi KS. //. Journal of Nanobiotechnology. 2014. V. 12. 28. DOI:10.1186/s12951-014-0028-6.
6. Никонов И.Н., Иванов Л.И., Коваленко Л.В., Фолманис Г.Э.  // Перспективные материалы.  2009.  № 4. С.54–57.
7. Чаленко Г.И., Герасимова Н.Г., Васюкова Н.И., Озерецковская О.Л. , Коваленко Л.В., Фолманис Г.Э. // АгроXXI.  2010.  № 1012, С. 31–33
8. van Loon, L.C., Rep, M. , Pieterse, C.M.J. // Annu. Rev. Phytopathol. 2006. V. 44. P. 135–162. DOI: 10.1146/annurev.phyto.44.070505.143425
9. Erlanger B.F., Kokowski N., Cohen W. // Arch. Biochem. Biophys. 1961. V. 95. № 2 P. 271–278
10. Хасанова О.С., . Хасанов Ф.К.  // Мол. Биол.  2016. Т. 50.  № 1. С. 179–183, DOI: 10.7868/S0026898416010067.
11. Удалова Ж.В.,  Ревина Т.А., Герасимова  Н. А., Зиновьева С. В. // ДАН. 2014. Т. 458, № 6. С. 726–729. DOI: 10.7868/S0 869 565 214 300 264.
12. Castagnone-Sereno P., Deleury E., Danchin E.G., Perfus-Barbeoch L., Abad P.  // Genomics. 2011. V. 97. №1. P.  29-36.
13. Antonino de Souza Junior J.D., Ramos Coelho R., Tristan Lourenco I., da Rocha Fragoso R., Barbosa Viana A.A, et al. //PLOS ONE,  2013, V.8 , №12,  e85364.
14. Vieira P., Danchin E.G., Neveu C., Crozat C., Jaubert S. et al.// J. Exp. Bot., 2011, V.62, №3,  P. 1241-1253.

Система Orphus

Загрузка...
Вверх