Оценка компонентов внеклеточного матрикса в сыворотке крови у больных алкогольным фиброзом печени

Изучали содержание молекул внеклеточного матрикса (ВКМ) в сыворотке крови больных алкогольным фиброзом печени (АФП), ранжированных в зависимости от стадии фибротического процесса. Обследовано 58 больных АФП (АФП, МКБ 10-K70.2) и 20 условно здоровых доноров. Оценку уровня молекул внеклеточного матрикса (тканевого ингибитора матричной металлопротеиназы-1, коллагена IV типа, гиалуроновой кислоты и N-терминального пептида проколлагена III типа) в сыворотке крови проводили с помощью твердофазного иммуноферментного «сэндвич» метода (ELISA). Установлено, что хроническое потребление этанола приводит к достоверному повышению в крови уровня (в сравнении с контролем) всех исследуемых молекул ВКМ. Содержание в сыворотке крови тканевого ингибитора матричной металлопротеиназы-1, коллагена IV типа и гиалуроновой кислоты (но не N-терминального пептида проколлагена III типа) у больных АФП четко коррелирует со стадией фиброза. Исследуемые нами молекулы ВКМ могут быть потенциальными кандидатами для определения стадии фиброза у больных АФП.

Ключевые слова

алкогольный фиброз печени, гиалуроновая кислота, коллаген, N-терминальный пептид проколлагена III типа, ТIMP-1

Получено

31.01.2019

Дата публикации

31.01.2019

Цитировать Скачать pdf Для скачивания PDF необходимо авторизоваться

ГОСТ	Газатова Н. Д. , Юрова К. А. , Гаврилов Д. В. , Такунова К. И. , Болотов А. П. , Скуратовская Д. А. , Литвинова Л. С. Оценка компонентов внеклеточного матрикса в сыворотке крови у больных алкогольным фиброзом печени // Российский иммунологический журнал – 2018. – Tом 12. – Номер 4 C. 559-564 [Электронный ресурс]. URL: http://ras.jes.su/ruimm/s207987840001570-6-1 (дата обращения: 29.04.2024). DOI: 10.31857/S102872210002375-7
MLA	Gazatova, N., Yurova, K., Gavrilov, D., Takunova, K., Bolotov, А, Skuratovskaia, D., Litvinova, L. "Evaluation of Components of Extracellular Matrix in the Blood Serum in Patients with Alcoholic Fibrosis of the Liver." Rossiiskii immunologicheskii zhurnal 12.4 (2018):559-564. DOI: 10.31857/S102872210002375-7
APA	Gazatova N., Yurova K., Gavrilov D., Takunova K., Bolotov А., Skuratovskaia D., Litvinova L. (2018). Evaluation of Components of Extracellular Matrix in the Blood Serum in Patients with Alcoholic Fibrosis of the Liver. Rossiiskii immunologicheskii zhurnal 12(4), pp.559-564 DOI: 10.31857/S102872210002375-7

Размещенный ниже текст является ознакомительной версией и может не соответствовать печатной.

всего просмотров: 798

Оценка читателей: голосов 0

1. Miller A. M., Horiguchi N., Jeong W. I., Radaeva S., Gao B. Molecular mechanisms of alcoholic liver disease: innate immunity and cytokines. Alcohol Clin Exp Res. 2011, 35 (5), 787–793.

2. Higuchi H., Gores G. J.Mechanisms of liver injury: an overview. Curr Mol Med. 2003, 3 (6), 483–490.

3. Li D., Li W., Chen Y., Liu L., Ma D., Wang H., Zhang L., Zhao S., Peng Q. Anti-fi brotic role and mechanism of Periplaneta americana extracts in CCl4-induced hepatic fi brosis in rats. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai) 2018, 50 (5), 491–498.

4. Wan J., Benkdane M., Teixeira-Clerc F., Bonnafous S., Louvet A., Lafdil F., Pecker F., Tran A., Gual P., Mallat A., Lotersztajnv S., Pavoinev C. M2 Kupffer cells promote M1 Kupff er cell apoptosis: a protective mechanism against alcoholic and nonalcoholic fatty liver disease. Hepatology 2014, 59 (1), 130–142.

5. Szuster-Ciesielska A., Plewka K., Daniluk J., Kandefer-Szerszeń M. Zinc supplementation attenuates ethanoland acetaldehyde-induced liver stellate cell activation by inhibiting reactive oxygen species (ROS) production and by infl uencing intracellular signaling. Biochem Pharmacol. 2009, 78 (3), 301–314.

6. Jeong W. I., Park O., Gao B. Abrogation of the antifibrotic effects of natural killer cells/interferon-gamma contributes to alcohol acceleration of liver fi brosis. Gastroenterology 2008, 134 (1), 248–258.

7. Lieber C. S., Weiss D. G., Paronetto F. Value of fi brosis markers for staging liver fi brosis in patients with precirrhotic alcoholic liver disease. Alcohol Clin Exp Res. 2008, 32 (6), 1031–1039.

8. Lykiardopoulos B., Hagström H., Fredrikson M., Ignatova S., Stål P., Hultcrantz R., Ekstedt M., Kechagias S. Development of Serum Marker Models to Increase Diagnostic Accuracy of Advanced Fibrosis in Nonalcoholic Fatty Liver Disease: The New LINKI Algorithm Compared with Established Algorithms. PLoS One, 2016, 11 (12), e0167776.

9. Li J., Niu J. Z., Wang J. F., Li Y., Tao X. H. Pathological mechanisms of alcohol-induced hepatic portal hypertension in early stage fi brosis rat model. World J Gastroenterol. 2005, 11 (41), 6483–6488.

10. Campbell S., Timms P. M., Maxwell P. R., Doherty E. M., Rahman M. Z., Lean M. E., Danesh B. J. Eff ect of alcohol withdrawal on liver transaminase levels and markers of liver fi brosis. J Gastroenterol Hepatol. 2001, 16 (11), 1254–1259.

11. Friedman S. L., Bansal M. B. Reversal of hepatic fi brosis – fact or fantasy? Hepatology 2006, 43 (2 Suppl 1), S82–88.

12. Suda T., Okawa O., Masaoka R., Gyotoku Y., Tokutomi N., Katayama Y., Tamano M. Shear wave elastography in hepatitis C patients before and after antiviral therapy. World J Hepatol. 2017, 9 (1), 64–68.

13. Gudowska M., Cylwik B., Chrostek L. The role of serum hyaluronic acid determination in the diagnosis of liver fibrosis. Acta Biochim Pol. 2017, 64 (3), 451–457.

14. Nøjgaard C., Johansen J. S., Christensen E., Skovgaard L. T., Price P. A., Becker U. Serum levels of YKL-40 and PIIINP as prognostic markers in patients with alcoholic liver disease. J Hepatol. 2003, 39 (2), 179–186.

15. Trocme C., Leroy V., Sturm N., Hilleret M. N., Bottari S., Morel F., Zarski J. P. Longitudinal evaluation of a fi brosis index combining MMP-1 and PIIINP compared with MMP-9, TIMP-1 and hyaluronic acid in patients with chronic hepatitis C treated by interferon-alpha and ribavirin. J Viral Hepat. 2006, 13 (10), 643–651.